значительной инфицированостью внешней среды и снижением вследствие этого
защитного уровня молозива.
Содержание иммуноглобулинов через 24 ч в сыворотке крови телят сильно
варьировало в составило от 19,85 до 29,11 мг/мл. Такая разница объясняется
количеством проглоченного теленком молозива.
Способность новорожденных животных адаптироваться к изменениям внешней
среды лимитировано и изменение условий, не влияющих на взрослых животных,
может плохо отразиться на состоянии здоровья телят. Известно, что стресс
является способствующим фактором возникновения диареи у телят. Причиной
стресса могут быть различные условия внешней среды, порой самые безобидные
и поэтому весьма трудно их предотвратить. Даже перемещение является
причиной стресса, который приводит к увеличению уровня заражения
инфекционными агентами. Низкая температура, сквозняки, влажная подстилка
способствуют возникновению и распространению инфекции. Следовательно,
иммунологический статус, необходимый для защиты организма зависит от
количества молозива, проглоченного теленком в первые минуты жизни и условий
внешней среды.
При концентрации иммуноглобулинов 15,37±0,19 мг/мг (доверительный
интервал 14,82-15,90 мг/мл) у животных отмечали септическую форму диареи,
депрессию, дегидратацию. Возникновение болезни характеризовалось профузным
поносом, усиленной перистальтикой кишечника, запавшими глазами, телята не
могли стоять и погибали в 7-10-дневном возрасте. Существенное уменьшение
концентрации иммунных глобулинов ассоциировалось с тяжелой формой
дегидратации и диареей.
Анализируя результаты абсорбции колостральных иммуноглобулинов
новорожденными телятами, необходимо отметить, что всасывание
иммуноглобулинов происходит в кишечнике и через лимфатические пути они
попадают в кровь. Иммуноглобулины появляются в лимфе через 1-2 ч после
поступления их в двенадцатиперстную кишку животных. Однако, факторы,
обеспечивающие всасывание нерасщепленных молекул белка, как и причины, по
которым оно становится невозможным, до настоящего времени изучены
недостаточно.
Некоторые авторы [J. E. Butler, C. A. Kiddy, C. Maxwele, M. B. Hylton,
A. Asofsky, 1971; J. E. Butler, C. Maxwele, 1972; P. Dobbelaar, I. P. T. M.
Noordhuizen and Van K. A. S. Keulen, 1987] указывают на существовании
специальных внутриклеточных рецепторов узнавания, обеспечивающих передачу
белков в крови. Исследования механизмов транспорта и катаболизма
иммуноглобулинов in vitro показывает, что на первых этапах всасывания
формируется комплекс между иммуноглобулинами и специфическими рецепторами
энтероцитов. Во взаимодействии с рецепторами клеток кишечника участвует Fc-
фрагмент иммуноглобулинов. По-видимому, связывание иммуноглобулинов с
клетками предохраняет их от катаболизма и способствует транспорту в крови.
Дальнейшее изучение колострального иммунитета новорожденных и
выживаемости животных в неонатальный период связано с разработкой ряда
вопросов выяснения механизма абсорбции иммуноглобулинов у новорожденных
животных и роли иммуноглобулинов различных классов в создании
колострального иммунитета; изучение клеточного колострального иммунитета;
определения наиболее важных факторов, оказывающих влияние на содержание
иммуноглобулинов в молозиве и сыворотке крови; унификация методов
исследования содержания иммуноглобулинов с целью получения сопоставимых
данных.
Изучая активность антител против К-антигена Е. coli в молозиве и в
сыворотке крови телят 1-2 -дневного возраста, установили, что она была
меньшей, чем активность против О-антигенов. Различная концентрация антител
(титр) в сыворотке новорожденных телят против К- и О-антигенов Е. coli
указывает, что кормление молозивом может стимулировать или подавлять синтез
антител к определенным антигенам в одинаковой степени независимо от места
их локализации в бактериальных клетках[B. Kaijser, S. Ahlstedt, 1977].
Иммуноглобулины в молозиво извлекаются селективной секрецией из
сыворотки крови коров. Следовательно, специфичность антител в молозиве
определяется специфичностью антител в сыворотке крови коров. Кроме того,
уровень антител в сыворотке крови коров зависит от воздействия на
иммунокомпетентные клетки специфических антигенов-иммуногенов, то есть
активность антител молозива коров является рефлекторным отражением
специфичности антигена. Вероятно, если определенные серотипы Е. coli
имеются во внешней среде (коровник, родильное отделение), коровы
впоследствии продуцируют специфические антитела и передают их через
молозиво телятам. это имеет место в том случае, когда инвазионные и
вирулентные серотипы Е. coli вызывают антигенную стимуляцию
иммунокомпетентных клеток большую, чем не вирулентные штаммы.
Высший средний титр колостральных антител против К-антигена Е. coli был
установлен против штамма Е. coli О137:К79. Идентификация антител в
сыворотке молозива и в сыворотке крови телят против серотипов Е. coli
О78:К80 и О119:К69 в более низких титрах и низшей частоте, может
постулироваться их незначительной вирулентностью, инвазивнностью или тем,
что антитела обладают перекрестной реакцией защиты и не специфичны для этих
серотипов.
Результаты абсолютного теста сыворотки молозива и сыворотки крови телят
указывают на перекрестную абсорбцию антител против Е. coli К- антигенов
исследуемых серотипов. Перекрестная абсорбция была, особенно, очевидной с 2-
типами В антигенов, так как абсорбция с 1 антигеном идентифицирует антитела
против 2 антигенов (О78:К80 и О119:К69). Эти данные подтверждают
значительную перекрестную реактивность антител к К-антигенам. Такая кросс-
реактивность антител обеспечивает защиту неонатальных телят против инфекции
с более чем 1 штаммом Е. coli. Следовательно, антитела с перекрестной
активностью против К-антигенов Е. coli в естественных условиях способствует
повышению резистентности неонатальных телят против различных штаммов.
Корреляционные таблицы биохимических показателей крови новорожденных
телят указывает, что определенные параметры имеют очень сходные поведение
(например, 1 и 4 бикарбонатная концентрация изменяется, непосредственно, в
зависимости от рН крови, феномен хорошо известный). На другие параметры
передается их обратная связь, как например, частичное соприкосновение с
противоположной связью СО2 и О2.
Кроме того, корреляционный анализ показывает на сопротивление между
парциальным давлением О2 в венозной крови и показателями кислотно-щелочного
равновесия, в частности парциального давления СО2 в порядке нейтрализации
метаболического ацидоза в нормальном противодействии уменьшающим количества
О2 в тканях. Следовательно, снижение парциального давления СО2 указывает на
уменьшение количества О2 в тканях.
Данные исследования показывают, что выжевшие телята имеют преимущество в
количественном отношении изучаемых величин перед павшими животными.
Концентрация калия (мера катаболизма) имеет тенденцию к увеличению, в то
время как концентрация натрия в крови уменьшается.
При тестировании естественной резистентности организма развивающихся
животных принципиально важным является вопрос о подборе тест-микроба.
Данные эпизоотологического анализа подтверждают, что во время
внутриутробного развития инфекционную патологию у крупного рогатого скота
вызывает преимущественно грамотрицательная микрофлора, поэтому для
определения противомикробной активности факторов естественной
резистентности (фагоцитоз, лизоцимная, бактерицидная активность),
использовали в качестве тест культуры эшерихии. Так как, по значимости в
патологии крупного рогатого скота, экологической пластичности, изученности
свойств, доступности для поддержания и использования требованиям,
предъявляемым к тест культурам, эшерихии являются наиболее подходящей
моделью.
При тестировании фагоцитарной активности лейкоцитов телят подбирали
соотношение тест-микроба и фагоцитирующих элементов, не допуская перегрузки
последних, что особенно важно для новорожденных животных. Во избежание
паралича фагоцитов, вызываемого патогенными факторами, в качестве тест
микроба использовали культуру не вирулентного штамма.
При определении бактерицидной активности особое внимание уделяли подбору
экспозиции контактирования тест- микроба с исследуемой пробой и тест штамма
эшерихий, колонии, которых для полноценного выявления противомикробных
свойств сыворотки должны быть в гладкой, а не в вариантных формах.
Лизоцимную активность определяли с учетом замедленной активности
фермента крупного рогатого скота, тщательной подготовки материала к
исследованию, что позволяло избегать ошибок, связанных с действием на тест-
микробы других метрических факторов исследуемой пробы.
Тестирование комплементарной активности сыворотки крови было основано на
подборе индикаторной системы, чувствительной к комплементу крупного
рогатого скота, который не вызывает лизиса эритроцитов в классической
гемолитической системе, вероятно, из-за лимитирующего содержания отдельных
компонентов [П. А. Емельяненко, О. И. Грызлова, Г. Н. Печникова и М. Н.
Тулупова, 1980].
Для определения пропердина использовали модифицированный метод, как
более доступный из-за удешевления источника комплемента и уменьшения объема
проб исследуемого материала [О. Н. Грызлова, П. А. Емельяненко, В. Н.
Денисенко, 1978].
Анализируя показатели неспецифической иммунологической реактивности
Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20